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[免疫学技术] IgG的分离与提纯

本主题由 nano 于 08-8-12 19:48 关闭 

IgG的分离与提纯

IgG的分离与提纯

% p4 b/ U/ U! O4 u
主要内容:+ S7 G' c5 a% c. o3 l) [( j
1硫酸铵沉淀法

4 T# |( T* \, O" M9 f2IgG的简易快速提取法
# h% R4 a2 r( C4 l6 ]3辛酸/硫酸铵法提纯IgG
: s7 p/ g/ Z+ n# Z, A& z+ `

0 I9 j; t$ B1 ~/ O声明:
, p- i. M& V* J1、 本篇涉及的资源主要源于网络及相关书籍,由酷友搜集、分析、整理、审改,供大家学习参考用,如有转载、传播请注明源于基因酷及本篇的工作人员;若本篇侵犯了您的版权或有任何不妥,请Email genecool@126.com告知。6 L1 T2 V$ e+ z6 R) U
2、 由于我们的学识、经验有限,本篇难免会存在一些错误及缺陷,敬请不吝赐教:请到基因酷论坛(www.genecool.com/bbs)本篇对应的专题跟贴指出或Email genecool@126.com: U2 P- }* k7 E9 ?
致谢:
$ T/ i7 K4 Y. y! |/ ]5 c4 R整理者:phyllis  审改者:peliang8 R6 ^+ g% ^* H( c+ ]. G5 j
主要参考资料:《IgG的分离与提纯》、《一种简单实用纯化腹水McAb方法一辛酸/硫酸铵法》
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硫酸铵沉淀法

硫酸铵沉淀法

' f* O& H5 r6 o% i& t
  以抗原免疫动物来制备的抗血清是一个非常复杂的混合物,包括血清的全部成分。但是同抗原特异性结合的抗体则主要是血清中的免疫球蛋白组分。通常用于制备酶标抗体或荧光抗体的免疫球蛋白必须高度纯化并具有特异性,不应含有非抗体的血清蛋白。因此,为了浓缩和提高抗体的效价,或为制备免疫球蛋白特异性抗体时,通常也需要分离和纯化免疫球蛋白。γ球蛋白(IgG)是血清免疫球蛋白的主要成分,约占全部免疫球蛋白的75%,因此,抗体的分离纯化主要是分离纯化IgG。
: S/ B4 b* z6 P* n5 u, A5 U/ U  纯化IgG小量几十ml的话,用protein A或protein G就可以,疏水柱等也可以纯化;大量的话,上百ml,可以使用streamline protein A。之前根据载量估计一下需要的柱子体积。* v- y* x/ B, y
  实验室中常用硫酸铵沉淀后过DEAE 纤维素柱,比较简便可获较纯的抗体。下面以此方法为例介绍IgG的分离与提纯。2 }7 o" @- V: e1 T
材料与试剂配制
' E7 E7 e: b- d' s( b: q
1. 动物血清! h+ ?) Q5 B6 L4 G$ k
2. 硫酸铵饱和溶液" T# m" @# y6 I6 u2 K# \6 {
  硫酸铵 800g~850g
( J7 |2 y. Z3 |. a5 ~: C$ u6 H  H2O 1 000ml
  u( W. ^6 ^# @. D  加热至绝大部分溶质溶解为止,趁热过滤,置室温过夜,然后以28%NH4OH调pH至7.0(不调pH值也可以)。# P# n* I; i8 b4 F
  注:硫酸铵以质量优者为佳,因次品中含有少量重金属对蛋白质巯基有影响。如次品必须除去重金属,可在溶液中通入H2S,静置过夜后滤过,加热蒸发H2S即可。
8 k0 C+ D/ K% d2 ]7 b6 V3. 0.01Mol/L pH7.4PB液
7 l0 [8 c$ F$ X" e& J; i0 `  A液:0.10Mol/L NaH2PO4液
4 q* V- b, G- D" I  NaH2PO4·2H2O 15.60g
6 o+ \) ~7 @$ F; f. v  加H2O至 1 000.ml1 n0 W; `: O1 q/ D1 {2 r7 z/ C
  B液:0.10Mol/L Na2HPO4液
$ B9 y; p8 r% c$ T' P$ k  Na2HPO4·12H2O 35.80g
& r6 G% a, g4 G: A! s& x  加H2O至 1 000ml/ X9 W: c. X2 I0 b: K8 V9 I7 R/ a
  取A液19ml,B液81ml加水至1 000ml即可。
- Q- }0 u* t# P: F8 u6 x  ?  ?* ]4. 1%BaCl2溶液! W- w0 ?$ D  j& R: q) _& C  R
5. 纳氏液1 ^( B& p; r9 @
  HgI 115.00g
& b. P6 Z% i& i+ C5 C  KI 80.00g, s% |& O' a, O) V+ D2 \" n
  加H2O至 500.00ml9 [! G. a/ {/ K& P
  溶化后过滤,然后再加20%NaOH500.00ml,混合即可。6 g; d% V2 V8 z4 M; y; x
6. 0.50 Mol/L的HCl液和0.50 Mol/L的NaOH液。2 d( c; N4 a. t/ F& g: n! E/ w
7. 洗脱液:0.03Mol/L的NaCl液。
4 \+ f, [2 l! F/ @8. 透析袋(或玻璃纸)。3 S, L& s- n5 R/ b% ?+ G9 a
操作方法3 p! y$ d. x" o: s* b) R
1. 取20ml血清,加生理盐水20ml,再逐滴加入(NH4)2SO4饱和溶液10ml,使成20%(NH4)2SO4溶液,边加边搅拌,充分混合后,静置30min。
4 y5 w/ D" c: W. J4 P2 A4 k2. 3 000r/min离心20min,弃去沉淀,以除去纤维蛋白。- X- O! l6 |$ O7 a% x2 f
3. 在上清液中再加(NH4)2SO4饱和溶液30ml,使成50%(NH4)2SO4溶液,充分混合,静置30min。
$ d5 y9 E; P* v% Y4. 3 000r/min离心20min,弃上清。
  J9 o; o5 L' X" B3 o5. 于沉淀中加20ml生理盐水,使之溶解,再加(NH4)2SO4饱和溶液10ml,使成33%(NH4)2SO4溶液,充分混合后,静置30min。! P9 P* d7 X5 T8 c; D
6. 3 000r/min离心20min,弃上清,以除去白蛋白。重复步骤5,2~3次。
" Q) I) }7 ]) U4 V7. 用10ml生理盐水溶解沉淀,装入透析袋。' [/ e5 ]! g# |  M6 `( @' f  C$ s
8. 透析除盐,在常水中透析过夜,再在生理盐水中于4℃透析24h,中间换液数次。. I8 j) J+ a2 |' x8 Z( ~' v: a
以1%BaCl2检查透析液中的SO42-或以纳氏试剂检查NH4 (取3~4ml透析液,加试剂1~2滴,出现砖红色即认为有NH4 存在),直至无 SO42-或NH4 出现为止。也可采用SephadexG25或电透析除盐。
+ G( v2 ?# o- ^7 P0 j' Q9 {9. 离心去沉淀(去除杂蛋白),上清液即为粗提IgG (即γ球蛋白,如以36%的饱和硫酸铵沉淀血清的产物即为优球蛋白,Euglobin,含γ球蛋白)。
+ C3 ?% F/ y- U5 s7 O& m10. 过DEAE-纤维素层析柱。以0.01Mol/L pH7.4PBS(0.03Mol/L NaCl)洗脱,收集洗脱液。也可采用SephadexG150或G200柱。
- e$ r: ~- U9 Q* O11. 蛋白质及其定量鉴定。' i! v( ]) i8 e
12. IgG的纯度鉴定 可采用下列方法之一鉴定。4 Q( l  G: u8 `' ~- i/ \
(1) 区带电泳:玻片琼脂或醋酸纤维膜电泳均可。加样电泳后,只在γ—球蛋白的迁移部位出现一条带。操作时,同时可用全血清样品,不同浓度(NH4)2SO4盐析样品进行电泳,以资比较。
+ D0 Y( N# X# |8 w- G4 [; W, D(2) 琼脂双相双扩散鉴定:预先准备该IgG免疫异种动物所获的抗IgG血清。将IgG与抗IgG血清进行双相双扩散,如IgG提纯的话,则在两样品孔之间出现一条沉淀线。
! b, d( H: B( e+ W% M(3) 免疫电泳鉴定:孔内加待测样品,电泳后,在槽内加抗IgG血清,琼脂扩散24h,观察结果。如果提取的IgG纯的话,则只出现一条弧形的沉淀线,且沉淀线位于γ—球蛋白区。此鉴定必须同时进行全血清及抗血清抗体的免疫电泳,以资比较。
9 O  j# F' s) K7 g& r* X$ r(4) 圆盘电泳鉴定:用全血清样品及提纯样品同时进行圆盘电泳。全血清样品在圆盘电泳上出现数十条区带,而纯化的IgG则只有一条区带。
# N  q; k# ~3 J- O9 s13. IgG的浓缩与保存
" U% v7 ]& x; f(1) IgG的浓缩。' }# K. I' p% D4 J6 {/ g: d0 I
(2) IgG的保存:一般浓缩至1%以上的浓度,再分装成小瓶冻干保存,或加0.01%硫柳汞在普通冰箱或低温冰箱保存,注意防止反复冻融。
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IgG的简易快速提取法

IgG的简易快速提取法


- F4 v  E* K% O; }- ?  应用硫酸铵盐析及DEAE-纤维素层析法提纯化的IgG,不仅操作复杂、需时较长,处理过程中样品体积大大增加,而且透析时变性严重,容易引起抗体效价降低等。为了克服这一不足,特别是当大量提取IgG时,则往往采取下列的简易办法。
$ ]% m4 W5 ?% J  ^6 D5 N1. DEAE-纤维素直接提取法3 `3 y1 O! _- r2 R1 w9 h
  取样品直接过DEAE-纤维素柱。下面介绍的是最为简单的烧杯法。
7 t# {1 P5 |$ z. n& D  g# c6 t(1) 以一定数量的DEAE52放入烧杯中,加入0.01Mol/L pH8.0PB缓冲液,静置30min,去上清细粒,再重复一次。
+ L* S0 o# j. g! m(2) 用布氏漏斗(内放两层滤纸)过滤。7 e1 [$ W* X& \3 \' t
(3) 以5g湿重的DEAE-纤维素加1ml血清及3ml蒸馏水混合液的比例,加入各成分,充分搅拌。
, O" ]% ]: m- k- R- y(4) 于4℃中放置1h,中间搅拌数次。
# {, Z  O% D, x. d0 e: g, P) Q# _, Q(5) 用布氏漏斗抽滤,再用0.01Mol/L pH8.0PB缓冲液冲洗纤维素,抽滤。滤液即为提取的IgG液。/ K% T3 _$ x* [
2. DEAE-SephadexA-50为弱碱性阴离子交换剂,经NaOH将Cl-型转变为OH-型后,可吸附酸性蛋白,血清中除γ-G属中性蛋白外其余均属酸性蛋白。当溶液的pH在6.5时,酸性蛋白均被DEAE-SephadexA-50吸附,只有γ-G留在溶液中。因此利用这一原理可以提取γ-G。这种提取法流程大大缩短,纯化前后样品体积变化不大,而且所得γ-G无变性现象。经过四次处理,其纯度也较好。缺点是收集量少,损耗大。
- Q3 k  l6 I0 A(1) DEAE—SephadexA—50的处理。取DEAE-SephadexA-50若干克,悬浮于蒸馏水中,1h后倾去上层小颗粒,然后用0.50Mol/L NaOH处理1h,蒸馏水洗至中性,再用0.5 Mol/L HCl处理0.5h,水洗至中性,最后以0.01Mol/L pH6.5PB液平衡、抽干。
, ?' Q" T! L5 y(2) 取一定的血清量,加等量的0.01Mol/L pH6.5PB液,再加液体体积1/4的滤干的DEAE-SephadexA-50,混合、4℃放置1h,不时搅拌、抽滤、收集滤液。) i5 g! W! u% z: D
(3) 再用同样重量的DEAE-SephadexA-50处理滤液。反复处理三次。(全程共四次)。获得滤液即为γ-G制品。" v1 r* o6 I2 Q  H' }
(4) DEAE-SephadexA-50的回收。用0.5Mol/L的Na2HPO4洗脱,抽滤至滤液中无蛋白(OD280﹤0.04)后,再用蒸馏水洗至中性即可回收使用。
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辛酸/硫酸铵法提纯IgG

辛酸/硫酸铵法提纯IgG

8 h; C, `6 a/ a3 f2 V
原理
; r: f  |" T7 G) `: L9 R( K: Z  在酸性条件下 ( pH4. 5),非1gG的蛋白成份(包括白蛋白,部分Ig),能被辛酸等短链脂肪酸沉淀,上清中剩余的蛋白主要为IgG,再用硫酸铵沉淀上清,即可获得纯度较高的IgG.。辛酸/硫酸铵法比硫酸铵法能够获得更高纯度的IgG。
: S" W& d3 m! [7 }# b  d6 N材料与方法
; N6 Q0 y0 `2 a材料
5 I3 I6 r3 N' {7 N* H
  动物腹水5 l  [: \' `: h6 @
  辛酸(caprylic acid, CA),化学纯( v4 R2 z4 A) _5 f
  硫酸钱,分析纯1 p3 ]6 G0 b; `/ U8 S: E2 b
  SPA Sepharose 4FF亲合层析柱
+ s9 w4 |8 s6 a4 m4 w4 V) H, W操作方法* G5 X- H% `4 q$ l
1. 蛋白含量测定  / B3 U) h( d+ e
 紫外分光光度法测样品在波长260nm, 280nm处的I及收光度(A 260, A 280) ,蛋白含量按以下公式计算:3 w3 y# h- R* R
  蛋白量(g/L)=(1. 45* A 280- 0. 74* A 260) *稀释倍数
$ W! ^8 W( R- G8 y# G2. 主要步骤
: k# f" ]; p* ^2 S(1) 腹水滤纸过滤去沉淀和脂质,滤液用4倍体积60mmo1/ L醋酸缓冲液(pH4. 0)稀释后,用N a0H调,}H值至4. 5;: O/ r6 c  W, e& Y( a7 |
(2) 逐滴加入辛酸(终浓度25u1/ ml) ,室温h搅拌30分钟后,以6000- 8000 r/ min.离心30分钟,收集上清液;
2 J  A3 _2 S4 v(3) 上清液经滤纸过滤2次,将滤液与10*PBS(0. lmol/L, pH7. 4)按10:  1比例混合,调pH至7. 4,置冰浴冷至40C ;
6 \$ q  J: |) _: x5 B9 ^(4) 每毫升上述混合液加0.2778固体硫酸钱,40C搅}'}` 30分钟,以4000- 6000r/ min离心巧一20分钟,将沉淀溶于少量YBS,透析,测蛋白含量,冻存。
( q/ w9 s( R7 f3. 硫酸铵沉淀法  - r( O+ J. X% Z4 p, P9 ]8 U; M
  按常规方法将腹水分别经50% , 33%饱和度硫酸铵沉淀。. }1 a  L5 N" q9 x0 q/ r- }
4. 亲合层析 " X" q( I  g# [7 ?) i! b" Y( B  B
  取提取的样品,用0.01lmol/ L Na2HPO4 (pH7. 4)透析,洗脱使样品中IgG结合于层析柱上,再用0. lmol/ L柠檬酸(pH4. 0)洗脱,收集洗脱液即获纯化IgG。9 P" i% H( L& I0 T- y  \  i- y
5. SDS—PAGE电泳鉴定抗体纯度% Y' X% w; }9 u9 h9 t; h# z! p
6. 间接ELISA法测定抗体效价
, L! L, ^# |& l: s9 \/ Y3 p   用sIgA包被酶标板,按常规方法测抗体效价。处理细胞,包被酶标板,测定抗体效价。
' D$ X# o7 I" u) g* [6 a7. 得率和回收率的计算
; B! n& @! X# P) Q; S  每毫升原腹水中提取的抗体量即为得率(Y field, g/ L );提取所得抗体量与原腹水中抗体量之百分比即为回收率(Recovery,%)。
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