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[免疫学基础知识] 精品免疫学相关资源汇总(不断整理中)

本主题由 人人为我 于 08-4-18 14:40 置顶 
武林三国
免疫球蛋白提取技术
免疫球蛋白(Immunoglobulin Ig)的含量代表着机体体液免疫的水平,并进一步代表着B细胞的功能,因此测定血清Ig含量可以推知机体的体液免疫功能和诊断某些疾病引起的Ig的过高和过低。
随着免疫学的发展和需要,免疫球蛋白的纯化和其成分的提纯成为必不可少的手段。纯化的方法很多,有单一法,但大多数采用二步法以上相结合的方法,特别是以硫酸铵提纯为基础,再经过层析柱的方法来提高免疫球蛋白及其各成分的纯度最为常用。
硫酸铵溶液能使蛋白质胶体脱水并中和其电荷而使之沉淀下来(称为盐析)。不同浓度的硫酸铵盐析蛋白成分不同,利用这一原理提取所需的免疫球蛋白成分。盐析只能粗提,为了获得纯化的免疫球蛋白成分,必须进一步采用层析的方法进行分离。
免疫球蛋白包括IgG、IgM、IgA、IgE和IgD。


一、      IgG的分离与提纯

(一)材料与试剂配制
1.动物血清
2.硫酸铵饱和溶液
硫酸铵        800g~850g
H2O          1 000ml
加热至绝大部分溶质溶解为止,趁热过滤,置室温过夜,然后以28%NH4OH调pH至7.0(不调pH值也可以)。
注:硫酸铵以质量优者为佳,因次品中含有少量重金属对蛋白质巯基有影响。如次品必须除去重金属,可在溶液中通入H2S,静置过夜后滤过,加热蒸发H2S即可。
3.0.01Mol/L pH7.4PB液
A液:0.10Mol/L NaH2PO4液
NaH2PO4•2H2O      15.60g
加H2O至        1 000.ml
B液:0.10Mol/L Na2HPO4液
Na2HPO4•12H2O      35.80g
加H2O至          1 000ml
取A液19ml,B液81ml加水至1 000ml即可。
4.1%BaCl2溶液
5.纳氏液
HgI        115.00g
KI        80.00g
加H2O至   500.00ml
溶化后过滤,然后再加20%NaOH500.00ml,混合即可。
6.0.50 Mol/L的HCl液和0.50 Mol/L的NaOH液。
7.洗脱液:0.03Mol/L的NaCl液。
8.透析袋(或玻璃纸)。
(二)操作方法
1.取20ml血清,加生理盐水20ml,再逐滴加入(NH4)2SO4饱和溶液10ml,使成20%(NH4)2SO4溶液,边加边搅拌,充分混合后,静置30min。
2.3 000r/min离心20min,弃去沉淀,以除去纤维蛋白。
3.在上清液中再加(NH4)2SO4饱和溶液30ml,使成50%(NH4)2SO4溶液,充分混合,静置30min。
4.3 000r/min离心20min,弃上清。
5.于沉淀中加20ml生理盐水,使之溶解,再加(NH4)2SO4饱和溶液10ml,使成33%(NH4)2SO4溶液,充分混合后,静置30min。
6.      3 000r/min离心20min,弃上清,以除去白蛋白。重复步骤5,2~3次。
7.      用10ml生理盐水溶解沉淀,装入透析袋。
8.      透析除盐,在常水中透析过夜,再在生理盐水中于4℃透析24h,中间换液数次。
以1%BaCl2检查透析液中的SO42-或以纳氏试剂检查NH4+(取3~4ml透析液,加试剂1~2滴,出现砖红色即认为有NH4+存在),直至无      SO42-或NH4+出现为止。也可采用SephadexG25或电透析除盐。
9.      离心去沉淀(去除杂蛋白),上清液即为粗提IgG (即γ球蛋白,如以36%的饱和硫酸铵沉淀血清的产物即为优球蛋白,Euglobin,含γ球蛋白)。
   10.过DEAE-纤维素层析柱。(装柱过程见层析技术)。以0.01Mol/L pH7.4PBS(0.03Mol/L NaCl)洗脱,收集洗脱液。
也可采用SephadexG150或G200柱。
   11.蛋白质及其定量鉴定(见本章第八节)。
   12.IgG的纯度鉴定  可采用下列方法之一鉴定。
⑴ 区带电泳:玻片琼脂或醋酸纤维膜电泳均可。加样电泳后,只在γ—球蛋白的迁移部位出现一条带。操作时,同时可用全血清样品,不同浓度(NH4)2SO4盐析样品进行电泳,以资比较。
⑵ 琼脂双相双扩散鉴定:预先准备该IgG免疫异种动物所获的抗IgG血清。将IgG与抗IgG血清进行双相双扩散,如IgG提纯的话,则在两样品孔之间出现一条沉淀线。
免疫电泳鉴定:(操作见第三章免疫电泳部分)。孔内加待测样品,电泳后,在槽内加抗IgG血清,琼脂扩散24h,观察结果。如果提取的IgG纯的话,则只出现一条弧形的沉淀线,且沉淀线位于γ—球蛋白区。此鉴定必须同时进行全血清及抗血清抗体的免疫电泳,以资比较。
⑷ 圆盘电泳鉴定:用全血清样品及提纯样品同时进行圆盘电泳。全血清样品在圆盘电泳上出现数十条区带,而纯化的IgG则只有一条区带。
   13.IgG的浓缩与保存
⑴ IgG的浓缩:参看本章第九节。
⑵ IgG的保存:一般浓缩至1%以上的浓度,再分装成小瓶冻干保存,或加0.01%硫柳汞在普通冰箱或低温冰箱保存,注意防止反复冻融。
(三)IgG的简易快速提取法
   应用硫酸铵盐析及DEAE-纤维素层析法提纯化的IgG,不仅操作复杂、需时较长,处理过程中样品体积大大增加,而且透析时变性严重,容易引起抗体效价降低等。为了克服这一不足,特别是当大量提取IgG时,则往往采取下列的简易办法。
1.      DEAE-纤维素直接提取法
取样品直接过DEAE-纤维素柱。下面介绍的是最为简单的烧杯法。
⑴ 以一定数量的DEAE52放入烧杯中,加入0.01Mol/L pH8.0PB缓冲液,静置30min,去上清细粒,再重复一次。
⑵用布氏漏斗(内放两层滤纸)过滤。
⑶以5g湿重的DEAE-纤维素加1ml血清及3ml蒸馏水混合液的比例,加入各成分,充分搅拌。
⑷于4℃中放置1h,中间搅拌数次。
⑸用布氏漏斗抽滤,再用0.01Mol/L pH8.0PB缓冲液冲洗纤维素,抽滤。滤液即为提取的IgG液。
2.DEAE-SephadexA-50为弱碱性阴离子交换剂,经NaOH将Cl-型转变为OH-型后,可吸附酸性蛋白,血清中除γ-G属中性蛋白外其余均属酸性蛋白。当溶液的pH在6.5时,酸性蛋白均被DEAE-SephadexA-50吸附,只有γ-G留在溶液中。因此利用这一原理可以提取γ-G。这种提取法流程大大缩短,纯化前后样品体积变化不大,而且所得γ-G无变性现象。经过四次处理,其纯度也较好。缺点是收集量少,损耗大。
⑴ DEAE—SephadexA—50的处理。取DEAE-SephadexA-50若干克,悬浮于蒸馏水中,1h后倾去上层小颗粒,然后用0.50Mol/L NaOH处理1h,蒸馏水洗至中性,再用0.5 Mol/L HCl处理0.5h,水洗至中性,最后以0.01Mol/L pH6.5PB液平衡、抽干。
⑵ 取一定的血清量,加等量的0.01Mol/L pH6.5PB液,再加液体体积1/4的滤干的DEAE-SephadexA-50,混合、4℃放置1h,不时搅拌、抽滤、收集滤液。
⑶ 再用同样重量的DEAE-SephadexA-50处理滤液。反复处理三次。(全程共四次)。获得滤液即为γ-G制品。
⑷ DEAE-SephadexA-50的回收。用0.5Mol/L的Na2HPO4洗脱,抽滤至滤液中无蛋白(OD280﹤0.04)后,再用蒸馏水洗至中性即可回收使用。
(四)禽血清IgG的分离与提纯(Na2SO4法)
1.试剂
⑴ 5%葡聚糖硫酸盐
⑵ 0.02Mol/L MnCl2溶液
⑶ 无水硫酸钠
⑷ pH8.2硼酸盐缓冲液
⑸ 0.06Mol/L pH7.4PB液
2.操作方法
⑴ 取禽血清10ml加5%葡聚糖硫酸盐液,0.40ml和0.025Mol/L MnCl21.00ml充分混合,静置,然后离心去沉淀,此步目的是为了去掉脂类物质。
⑵ 于上清液中加无水硫酸钠使每毫升血清含0.18g,缓慢加入,混匀,静置30min,3 000r/min离心去上清。
⑶ 以pH8.2硼酸盐缓冲液将沉淀稀释至原血清的一半再加硫酸钠使成0.16g/ml,同上法离心去上清。
⑷ 重复步骤⑶,加Na2SO4,使成0.14g/ml。
⑸ 以少量硼酸盐缓冲液溶解沉淀,然后装透析袋除盐48h。
⑹ 过SephadexG200柱,收集第一峰和第二峰。第一峰是IgM,第二峰主要是IgG。
⑺ 如要进一步提纯,则用第二峰再过DEAE—纤维素柱,以0.06Mol/L pH7.4 PB液洗脱,洗脱下来的蛋白液即为IgG。
也可以按以下操作方法进行:
⑴ 以18%硫酸钠(W/V)提取一次,再以14%的硫酸钠提取一次。
⑵ 将粗提的免疫球蛋白以PBS溶解,按9%加入无水硫酸钠,离心。再将上清按5%加入无水硫酸钠,离心。将两沉淀溶解、混合,在常水中透析过夜,再在生理盐水中4℃透析,直至无SO42-为止。
⑶ 离心将上清液以pH8.0 0.20Mol/L PBS液平衡。
⑷ 过SephadexG200柱,以pH8.0 0.20Mol/L PBS液洗脱,收集洗脱液,取第二峰即为鸡IgG。


二、IgM的分离与提纯

(一)材料
1.血清
2.葡聚糖凝胶G200
3.洗脱液0.01Mol/L pH7.4PBS(0.14Mol/L NaCl或0.1Mol/L pH8.0 Tris-HCl+0.14Mol/L NaCl)。
(二)      操作方法
选取2.50cm×90cm层析柱,用葡聚糖凝胶G200装柱,平衡后,直接加血清样品10ml或硫酸铵粗提制品,洗脱液洗脱,流速0.25ml/min,分管收集,测OD280值,第一峰即为IgM。将第一峰的数管混合,浓缩、鉴定。


二、      IgA的分离与提纯

(一)材料与试剂配制
1.DEAE52纤维素
2.0.10Mol/L ZnSO4液
ZnSO4•7H2O       2.88g
加水至1 000.00ml
3.饱和硫酸铵溶液
4.10%EDTA—Na
5.SephadexG200
6.0.01Mol/L pH7.4PB液
7.0.10Mol/L pH6.4PB液
8.血清
(二)操作方法
1.取血清加等量的0.1Mol/L ZnSO4液,调pH至7.0,室温搅拌1h,离心去沉淀。
2.于上清液中加入等量的饱和硫酸铵溶液,混匀后静置30min或冰箱过夜。
3.10 000r/min离心10min,去上清。
4.取沉淀溶于4ml10%EDTA-Na溶液中。
5.生理盐水中透析除盐。
6.过DE52柱,用0.01Mol/L pH7.4PB液洗脱蛋白(IgG)弃去。
7.换用0.1Mol/L pH6.4PB液洗脱,收集蛋白峰,即为IgA。
8.再过SephadexG200柱,洗液为0.01Mol/L pH7.4PBS(0.14Mol/L NaCl),收集洗脱液测OD280值,取第一峰即为纯化IgA。
9.透析、浓缩、鉴定。

四、      分泌型IgA的分离与鉴定

(一)材料与试剂
1.初乳
2.SephadexG200
3.0.10Mol/L pH6.8PB液
4.0.01Mol/L pH7.4PB液
5.DEAE52
(二)操作方法
1.取初乳20ml,10 000rpm离心10min,弃去表面脂肪层及底部的沉淀物。
2.取乳清过SephadexG200柱(柱规格为2.50cm×90cm),以0.10Mol/L pH6.8PB液洗脱,第一峰为IgA(含IgG)。
3.      收集乳液,于0.01Mol/L pH7.4PB液中透析。
4.      将透析液浓缩至5mg/ml以上。
5.      过DE52层析柱,用0.01Mol/L pH7.4PB液洗脱,洗下蛋白峰为IgG,弃去。
6.      换用0.10Mol/L pH6.8PB液或0.01Mol/L pH7.4PBS(0.10Mol/L NaCl)液洗脱,
收集洗脱液 ,即为较纯的IgA液。
7.      必要时,可再过一次SephadexG200柱。
8.      浓缩,鉴定


五、      禽IgA提取与纯化

(一)材料与试剂配制
1.禽胆汁
2.饱和硫酸铵溶液
3.0.01Mol/L pH7.4PBS液
4.0.10Mol/L pH6.4PBS液(0.30Mol/L NaCl)
5.      DEAE52-纤维素
(二)操作方法
1.取冷藏的胆汁3Ⅹml,缓慢滴加Ⅹml饱和硫酸铵液,边加边搅拌,使成25%饱和硫酸铵液。4℃放置30min。
2.      3 000r/min离心30min,去沉淀。
3.      取上清,加饱和硫酸铵液,使成35%的饱和度,4℃放置30min。
4.      3 000r/min离心30min,弃上清。
5.      取沉淀,加0.85%NaCl液溶解,加饱和硫酸铵溶液,重复步骤3和4三次。
6.      将沉淀用0.85%NaCl液溶解,装入透析袋,以0.01Mol/L pH7.4PBS液透析。
7.      以0.01Mol/L pH7.4PBS液平衡,过DEAE52纤维柱(20×250mm)。
8.      取透析样品4ml(﹥20mg/ml蛋白浓度)加入层析柱。以0.01Mol/L pH7.4PBS液洗脱。
9.      再用0.10Mol/L pH6.4PBS液(NaCl浓度为0.30Mol/L)洗脱,收集洗脱液。
10.浓缩洗脱蛋白液至20mg/ml,分装,低温冰箱保存。


六、      IgE的分离与提纯

(一)材料与试剂
1.血清
2.饱和硫酸铵溶液
3.洗脱液0.005Mol/L pH7.4PB液
0.025 Mol/L pH7.4PB液
0.01Mol/L pH7.4PBS液(0.14mol/L NaCl)
   4.DE52
5.SephadexG150
(二)操作方法
1.取血清倍比稀释后,加等量饱和(NH4)2SO4溶液,盐析。
2.离心取沉淀,溶于少量生理盐水中,透析、除盐。
3.过DE52柱,以0.005Mol/L pH7.4PB液洗脱,收集洗脱蛋白峰(IgG),弃去。
4.换以0.025Mol/L pH7.4 PB液洗脱,洗下的蛋白峰主要是IgE。
5.透析除盐。
6.过G150柱,以0.01Mol/L pH7.4PBS(0.14Mol/L NaCl)洗脱,收集洗脱液即为纯化的IgE。
7.      浓缩、鉴定。

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武林三国
免疫酶细胞化学固定和切片  



  若想得到理想的ICC染色结果、正确地判断抗原物质在组织细胞内的位置,除需有良好酶和抗体外,保持组织细胞内抗原物质的不动性(Immobility)和免疫活性也是至关重要的。换言之,如果抗原物质在组织细胞间弥散、丢失或失去免疫活性,无论如何努力染色都是徒劳的,所以说固定是ICC染色中非常重要的一环。ICC与其它组织学技术不同,除要求保存良好的结构外,还需保存组织抗原的免疫活性。一般认为,新鲜组织能够最大限度地保存组织抗原的免疫活性,但结构较差,易出现抗原弥散丢失现象。Cumming(1980)报告,不固定的组织切片ICC染色时,环鸟苷酸含量丢失80%以上。固定的目的是使构成组织细胞成分的蛋白等物质不溶于水和有机溶剂,并迅速使组织细胞中各种酶降解、失活,防止组织自溶和抗原弥散,保持组织细胞的完整性和所要检测物质的抗原性。因此迅速充分固定是ICC染色成功的关键一步。用于ICC的固定剂种类较多,选择时应根据所要检测物质的抗原性质和切片方法以及所用抗体特征等做最佳筛选。制片及固定方法见第一章 ,下面介绍两种近年报道的新方法。

  1.AMEX(Acetone Meth Enzoate Xylene )法  是改良的冰冻置换法(freeze substitution)的简称,主要用于石蜡包埋标本。Sato(1986)报告,该法具有同新鲜(未固定)组织冰冻切片同样的抗原保持性和石蜡切片的良好组织结构保存。其机制为:组织在丙酮中固定(脱水),组织细胞内水份逐渐被丙酮取代,继之,用苯甲酸酯取代组织内丙酮,经二甲苯置换后,石蜡包埋。组织在-20℃丙酮内过夜亦形成冰晶,所以原方法将组织先置4℃丙酮20~30min,再移入-20℃丙酮过夜。实际上组织在4℃丙酮内过夜亦可得到同样效果。如在该固定液内加入少量蛋白酶活性阻断剂,并采用低溶点石蜡包埋等,可获得更佳染色结果。

  2.微波固定(Microwave fixation)  为近几年所注目的问题之一。该方法能保持良好的组织结构和抗原性,适于各种切片的酶组化、ICC以及免疫电镜等材料固定。其固定机理可能与微波(频率1000~3000MHz)具有被水分吸收的性质(通常所用的微波是频率2450MHz,波长12cm);生物材料含有大量水份,照射后,温度升高,分子运动加快,促进固定液向组织内渗透,加速与组织成分的反应,短时间内达到固定的效果等有关。经微波照射固定的组织,需置相同固定液中,继续固定2~6h,室温。

  近年研究的专门固定用的微波炉已商品化,例如:Bio-Rad H2500型、日新EM·MWE-2等,该类微波炉能够准确地调节 照射时间和测定被照材料的瞬时温度。利用家庭微波炉代替时,应选用能以秒为单位调控的微波炉。实验材料不同,所需固定液的量、照射时间等各异,所以应在预实验的基础上,找出合适的固定液量、照射时间和温度。多数实验室的条件为:固定液5~10ml,照射10~30s,照射后固定液的温度≤50。C。其方法为:将实验标本置于微波炉旋转台的中央,周边放一烧杯盛300~500ml纯水,吸收照射时炉内产生的热量,选择强挡照射10~30s 。接通电源(on)至微波产生利用超声波代替微波照射,或二者并用,照射后,组织标本和固定液的温度升高较少,亦能获得短时间内良好的固定效果(Yasuda 1992)。

  二、切片

  光镜ICC染色,常用的有冰冻切片和石蜡切片两种,二者各有其优缺点,应根据抗原的性质、实验室条件,合理选择之。对未知抗原显示时,最好同时应用。冰冻切片为ICC研究所首选。

  Shi(1991)等报告:微波炉照射的切片,能够激活部分核内抗原活性。其机制不清,可能与高温、高热的作用,使核内DNA双链解开,DNA、RNA解离,抗原暴露有关。其步骤为:将切片脱蜡水洗后,置染色瓶中,加入去离子水或缓冲液至瓶颈处,反复多次照射,每次1min,照射5~10次,每次照射后,补充瓶中蒸发掉的液体,照射温度不超过90~95℃为宜。此处理后,细胞核染色以苏木精为佳

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细胞凋亡和免疫耐受
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  抗体直接捕获

  抗体间接捕获

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  CD8细胞电镜图

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  妊娠试验

  直接和间接免疫荧光

  放射免疫

  蛋白印迹

  MHC-I和MHC-II类分子的比较

  与MHC-I结合的抗原肽构象

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  HLA-I分子结构

  HLA-II分子结构

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  HLA-I与肽结合

  HLA-II与肽结合

  与HLA-I和HLA-II结合的肽类分子比较

  MHC导致新单体型的重组

  小鼠皮肤移植

  抗原处理与递呈

  MHC-II和抗原肽的合成

  MHC-I分子的合成

  细胞内蛋白降解

  MHC限制性实验

  抗原处理过程

  MHC-I和抗原肽的合成

  内源性和外源性抗原处理过程

  内源性和外源性抗原的处理过程

  抗原递呈过程中TH细胞的作用

  细胞毒性T细胞抗病毒的MHC限制性

  CTL的TCR识别抗原肽的MHC限制性

  T细胞识别改变的自身抗原模型

  B和 T细胞受体比较

  T细胞受体克隆

  T细胞受体基因

  ab T细胞受体基因重组

  ab TCR基因重组图

  TCR和Ig多样性产生机制比较

  TCR-CD3复合物

  CD4 和 CD8的结构

  CD4, T细胞受体模型

  CD8和MHC类分子及肽结合模型

  TCR/MHC class II/CD4

  TH 和 TC细胞表面分子

  TCR-MHCII-肽

  TCR- Peptide - Class II

  TCR- Hypervariable Domains- Class II

  自身反应性T细胞

  TCR 多基因家族

  小鼠Ig和TCR基因多样性的比较

  T细胞附属分子

  胸腺中 T细胞的发育

  T细胞活化的信号转导

  cyclosporin A 和 FK506的免疫抑制机制

  CD28/ CTLA-4 - B7-1 /B7-2

  CD28-B7的作用

  超抗原
     效应及记忆性T细胞的产生

  APCs激活效应性 T细胞

  T细胞死亡的诱导机制

  Fas/FasL

  胸腺中TCR基因的表达

  胸腺中前T细胞受体

  胸腺MHC与T细胞成熟

  T细胞成熟、活化与分化

  MHC限制性依赖于胸腺I/II类分子表达

  胸腺中TCR基因重排

  胸腺细胞的阴性选择需要自身抗原和MHC

  


  胸腺中T细胞发育途径

  B细胞发育

  在骨髓中B细胞的发育

  骨髓中抗原非依赖的B细胞成熟

  B细胞发育中替代链的作用

  B成熟中克隆删除和轻链编辑

  TI和TD抗原激活B细胞

  BCR激活的信号转导

  B细胞受体交联的信号转导途径

  B细胞受体复合物

  TD抗原激活B细胞

  成熟外周B的克隆无能

  细胞因子与B细胞

  IL2 和IL4的3D结构

  细胞因子调节白细胞的活化和分化

  IL-2受体

  IL-2受体超家族

  IL-2-IL-2R

  IL-4R

  TH1和TH2细胞激活

  TH1和TH2

  补体的生物学活性

  C4b 和 C3b

  补体介导的溶菌作用

  抗体和C3b的调理作用

  清除免疫复合物

  补体活化的三种途径

  C1q, C1r2s2, 和 C1 (C1qr2s2)结构

  IgM五聚体

  IgM

  补体活化步骤

  C4b2a形成

  C3b和 C3a

  C3b结合细胞膜

  补体活化的替代途径

  C9复合物形成

  MAC造成膜损伤

  补体激活的调节1:C1Inh抑制C1r2s2形成

  补体激活的调节2:C4BP和I因子抑制C3转化酶形成

  补体激活的调节3

  补体激活的调节4

  补体激活的调节5

  补体激活的调节6

  CTL效应细胞的产生

  NK, 和 CTL 应答

  NK识别信号

  ADCC

  MLR

  CML

  DTH

  DTH应答

  INF-g 作用

  IFN-g激活的巨噬细胞

  CTL-Ps

  CTL介导的杀伤作用

  CTL和ICAM-1

  CTL介导的靶细胞膜损伤形成

  同种异体反应性CTL1

  同种异体反应性CTL2

  CTL诱导靶细胞凋亡

  局部急性炎症反应

  IFN-g

   

  TNF-a1

  TNF-a.2

  细胞黏附分子家族

  T细胞进入淋巴结

  I型超敏反应的处理

  II型超敏反应

  III型超敏反应

  IV型超敏反应

  IgE介导的I型超敏反应

  肥大细胞降调节的机制

  流感病毒的结构

  流感HA亚单位

  免疫缺陷疾病

  CD4-趋化因子受体-HIV

   

  X连锁免疫缺陷

  免疫缺陷-信号转导

  DiGeorge综合症

  裸鼠

  HIV结构

  抗体-TSH

  重症肌无力

  SLE

  多发性硬化症

  自身免疫的机制

  移植排斥反应

  溶血斑实验

  原位杂交

  DNA杂交

  转基因小鼠

  基因敲除

  纯合子基因敲除

  杂交瘤

  免疫学细胞信号传导图片

  补体三种激活途径

  补体旁路途径

  补体经典激活途径

  B细胞表面分子

  BCR信号途径

  旁观者B细胞激活

  B细胞提呈抗原

  淋巴细胞上的黏附分子

  Tc细胞介导的免疫应答

  CXCR4介导的信号传导

  肥大细胞Fc 受体I的信号传导

  HIV诱导T细胞凋亡

  Lectin 诱导的补体激活途径

  单核细胞和它的表面分子

  Msp/Ron受体信号传导

  神经肽VIP PACAP抑制活化T细胞的凋亡

  嗜中性粒细胞和它的表面分子

  OX40信号途径

  NK细胞介导的细胞毒作用的Ras非依赖途径

  细胞毒性T细胞的表面分子

  B细胞介导的免疫应答的TACIBCMA 的刺激

  TCR信号途径

  辅助性T细胞的表面分子

  T细胞活化的协同刺激信号

  TOLL受体

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