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[原核表达] 可溶性蛋白表达量低


武林三国

可溶性蛋白表达量低

最近做实验遇到了些问题,是关于大肠杆菌表达的,前期课题组构建了一大肠杆菌基因工程菌,表达量上不去,可溶性蛋白的量少的很,我分别用诱导温度,诱导剂浓度和诱导时间来优化,量还是没上去,我借用了其他课题组构建的工程菌来测试,他们的表达量却好高,由于第一次做诱导方面的工作,所以不知道哪里出问题了。看了些论坛的资料,自己猜测了些可能存在的问题


表达量差不多是20ml的培养基离心取沉淀,用20ml磷酸缓冲液重悬,超声破碎。用考马式法测定可溶性蛋白浓度大概在0.5mg/ml左右,请问一下高通量表达蛋白的浓度应该是多少。实验室用的质粒是pet-28a。需要表达的酶序列为3000bp左右!

我想问一下大侠们,可能存在的问题是在哪里?如何来验证?

[ 本帖最后由 need_cloth 于 08-3-29 22:38 编辑 ]

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“用了其他课题组构建的工程菌来测试,他们的表达量却好高”
他们的菌株、质粒和你用的是一样的么?他们表达的蛋白也是一样的么?

你的菌是新转化的?还是冻存保存了很久?有没有提质粒重转化,重新涂板,重新挑单菌再来测试?表达的蛋白分子量正确么?

如果以上一切都没问题,可能你的蛋白本身表达确实是会比较低,毕竟是个110kd左右的蛋白了,还是可溶。

0.5mg/ml是总蛋白还是目的蛋白?目的蛋白的话,不错了,还可以了。如果是总蛋白的话,你开始诱导前,OD600多少?

要再提高产量可以考虑自动诱导培养基。http://www.genecool.com/bbs/thread-118-1-1.html

[ 本帖最后由 tangboyun 于 08-3-29 23:48 编辑 ]

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武林三国
谢谢你的帮忙!

菌是前期课题组构建的,其他课题组构建的表达的酶和我的是一样的,但是表达量却比我高好多,0.5mg/ml 是总蛋白不是目的蛋白,开始诱导前OD600为0.6,诱导温度26度,iptg为1.0,时间5h。

我想问一下可能存在的问题是在质粒身上还是在表达系统上?

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0.5mg/ml 是总蛋白的话,好像很低阿,你摇了以后菌变少了么。还是有许多蛋白形成了包涵体?看下不溶性的沉淀里,是不是有大量你的蛋白,如果是形成包涵体,你可能要优化表达条件。

菌的话,重新划板看看,挑一个大些的菌落再诱导试试看。

你借用“其他课题组构建的工程菌”,质粒构建的都一样么?菌株也一样么?不放心就重新测一次序。

“其他课题组构建的工程菌”,这个菌如果用的是BL21DE3,JM109DE3这种本身不带其它质粒的表达菌的话,你就把这个表达菌的质粒用普通LB抗性培养基摇一下抽提出来转DH5alpha,一起送去测。

[ 本帖最后由 tangboyun 于 08-3-30 14:42 编辑 ]

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武林三国
谢谢你的帮忙!
我用的大肠杆菌是E.coli BL21(DE3),培养基加kana,菌体破碎后用考马斯法测上清蛋白只有0.5mg/ml 是不是太低了?大概多少才合适?

让我郁闷的是其他课题组的诱导温度在37度都能出目的蛋白,我的26度都不行,哎~!


我试试E.coli BL21(DE3)中重提质粒转入到其他大肠杆菌中表达试试!

[ 本帖最后由 need_cloth 于 08-3-30 15:10 编辑 ]

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你的破碎可能有问题,有没有破碎完全?换溶菌酶裂解看看,把菌液浓缩后,加入适量溶菌酶,等溶液变粘稠以后用超声略微震荡至不那么粘稠为止。具体如何用溶菌酶查一下相关资料。

菌体总蛋白随OD不同,也不同的,但至少该在数g至数十g每升。

我的建议:
1、你看看破碎离心以后的沉淀是不是有很多,可能破碎不完全,导致释放的蛋白少,若破碎完全,看看有无包涵体

2、若以上都无问题。测一下你的质粒,是不是有移码突变,导致阅读框无法终止,这样既检不出目的蛋白,又会造成菌体总蛋白含量降低。(因为同样的蛋白,按你所说其他人表达的很好,所以排除毒性蛋白的问题) 最简单的办法,要其他人的质粒转化后相同条件诱导一次看看结果。

[ 本帖最后由 tangboyun 于 08-3-30 15:28 编辑 ]

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武林三国
谢谢你的帮忙,我想破碎应该没有问题,用的是750w大功率超声破碎,500w左右超声破碎时间6分钟,总共时间11分钟左右,个人感觉菌体也不粘稠!


我同学的质粒和E.coli也和我的一样!

[ 本帖最后由 need_cloth 于 08-4-1 20:57 编辑 ]

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我想问一下移码突变是怎么样的情形?

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武林三国
你用你同学的那个表达的很好的质粒,拿过来转化你自己的菌,用你的条件诱导次看看。
你是用超声破碎细胞的,核酸肯定破碎时候被打断的,所以不会变粘稠的,溶菌酶破碎需要打断核酸,不然液体很粘稠不利于离心。

移码突变的情况我遇到过一次,PCR拉了T载体上序列以后切了下连入载体,死活见不到表达条带,但诱导的细菌对比对照的,本身的蛋白表达下降,测序以后发现阅读框中就在引物上游有个移码突变,原先的终止密码子失效,可以通读……

[ 本帖最后由 tangboyun 于 08-4-1 21:18 编辑 ]

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谢谢你的帮忙!

如果确定是移码突变的只有重新构建了吧?如果是重新构建的话在构建的时候要注意哪些方面(在减少移码突变方面)!

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